膜聯蛋白 V （或膜聯蛋白 A5）是胞內蛋白磷脂結合膜聯蛋白家族的成員。在流式細胞術和熒光顯微鏡中，膜聯蛋白 V 常用于檢測凋亡細胞，因為它能夠以鈣依賴性方式特異性結合磷脂酰絲氨酸 (PS)。該方法由 Koopman 等人首先報道。 （1994）[1]。
在健康細胞中，PS 通常保留在質膜的內層。細胞凋亡早期伴隨著膜磷脂不對稱性的喪失，導致細胞表面PS暴露。這種易位是由 Xkr8 擾亂酶被效應器 caspase-3 裂解后激活所介導的。與碘化丙啶 (PI) 等活體染料結合使用，熒光染料標記的膜聯蛋白 V 可以區分健康 (Annexin ? PI ? )、凋亡 (Annexin + PI ? ) 和壞死 (Annexin + PI + ) 細胞[2]，并對細胞凋亡和/或壞死導致的細胞死亡進行定量分析。
AF488 是明亮、光穩定、親水性磺化羅丹明熒光團。該染料在綠色 (FITC) 通道中發射。其最大吸收量最大發射波長為 495 nm。位于 519 nm。
碘化丙啶是一種膜不可滲透的 DNA 染色劑，可根據膜的完整性區分壞死細胞、凋亡細胞和健康細胞。 DNA 結合后，染料在橙紅色通道中發射。其最大吸收量最大發射波長為 535 nm。位于 617 nm。
該細胞凋亡檢測試劑盒可進行 50 次測試，包含使用 AF488 偶聯的膜聯蛋白 V 和碘化丙啶標記凋亡和壞死細胞所需的所有試劑。
運輸：常溫下保存1周。儲存于-20°С。
保質期9個月。
建議的膜聯蛋白 V-AF488 最終濃度為 2 至 5 µg/mL，具體取決于所研究的細胞培養物。實驗前需要對Annexin V-AF488的不同稀釋度進行測試，以確定最佳濃度。
可選用碘化丙啶染色 。如果不需要檢查壞死情況，可以跳過此步驟。
重要的！膜聯蛋白 V 只能用作具有完整質膜的細胞凋亡的標志物。如果質膜的完整性受到破壞，Annexin V 就會與細胞內的 PS 結合并產生假陽性結果。
將膜聯蛋白 V-AF488 凍干結合物 (11172)管的內容物溶解在 50 µL 去離子水中。 / 將膜聯蛋白 V-AF488 凍干結合物 (21172)管中的內容物溶解在 250 µL 去離子水中。
重要的！ 溶解的結合物應避光保存在
將 1 份 5x 結合緩沖液與 4 份去離子水 混合，制備所需體積的 1x 結合 緩沖液。
以合適的方式小心地從生長表面去除貼壁細胞。有了懸浮細胞，就從下一步開始工作。
用冷 PBS (pH7.4) 洗滌細胞一次，并用 1x 結合緩沖液洗滌細胞一次。
將細胞重懸于冷的 1x 結合緩沖液中。
在 1.5 mL 微量離心管中收集 100 μL 細胞懸浮液（1×10 5至 1×10 6細胞/mL）。對于流式細胞術，有必要準備帶有適當對照的額外試管（參見下面的對照說明）。
將 2-5 µL 的膜聯蛋白 V-AF488 溶液添加到每個管中，并在室溫下避光 孵育
無需預先清洗，向每個管中添加 400 µL 1x 結合緩沖液。
（可選）向每個管中添加 5 µL 碘化丙啶。輕輕混合管中的內容物，并在室溫下避光孵育 5 分鐘。
重要的！不要清洗細胞以去除碘化丙啶。在數據收集期間，碘化丙啶必須保留在緩沖區中。
染色的細胞應保存在
暗處直至分析。
重要的！由于碘化丙啶對細胞活力的負面影響，必須在染色開始后 4 小時內通過流式細胞術或熒光顯微鏡進行定量分析。
對于細胞凋亡和壞死的細胞熒光分析，需要準備以下對照：未染色的細胞（儀器設置的陰性對照）；僅用膜聯蛋白 V-AF488 染色的細胞，僅用碘化丙啶染色的細胞（以調整補償）。
使用 FITC 發射信號檢測器分析膜聯蛋白 V-AF488 的結合。
使用藻紅蛋白發射信號檢測器分析碘化丙啶染色。
將一滴染色的細胞懸液轉移到載玻片上。用蓋玻片蓋住細胞。
或者，貼壁細胞可以直接在蓋玻片上染色。染色后，將蓋玻片翻轉到載玻片上，將細胞放置在載玻片和蓋玻片之間。
（可選）用膜聯蛋白 V 染色后，可以用 1x 結合緩沖液洗滌細胞，并在成像前將細胞固定在 2% 多聚甲醛中。在與膜聯蛋白 V-AF488 一起孵育之前不要固定細胞，因為細胞膜的任何破壞都可能導致膜聯蛋白 V 與細胞膜內表面上的 PS 非特異性結合。
使用熒光顯微鏡對細胞進行成像，并使用 FITC 和羅丹明濾光片組。
結合了膜聯蛋白 V-AF488 的早期凋亡細胞的質膜呈綠色。
由于碘化丙啶滲透到細胞中，壞死細胞被染成紅色。
由于繼發性壞死而膜完整性受損的凋亡細胞被染成紅色（碘化丙啶），并在細胞表面（質膜）上出現綠色暈圈（Annexin V-AF488）。
活細胞保持未染色。
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