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2025年5月，《新英格蘭醫學雜志》披露個體化CRISPR基因編輯療法重大突破：研究團隊以“6個月極速響應"，為罹患罕見病——氨基甲酰磷酸合成酶1（CPS1）缺陷癥的9.5個月大嬰兒完成全流程定制化治療開發。通過堿基編輯技術精準修復致病突變，患兒血氨水平、體重等關鍵指標顯著改善，標志著人類在“單患者基因精準治療"領域實現“從0到1"的歷史性跨越。
罕見病患兒KJ剛出生就確診氨基甲酰磷酸合成酶1（CPS1）缺陷癥，因肝臟無法正常代謝氨，面臨腦損傷甚至死亡風險，傳統治療需依賴排氮藥物、嚴格低蛋白飲食及肝移植。研究團隊借助堿基編輯技術，針對KJ來自父母雙方的致病突變，僅用6個月完成全流程開發，從構建攜帶相同突變的小鼠模型與細胞系、跨物種（猴子）安全性驗證，到定制化藥物“k-abe"的生產。2024年2月，KJ接受兩次靜脈注射后，血氨濃度、谷氨酰胺水平等關鍵生化指標顯著改善，體重從同齡嬰兒第9百分位躍升至第26百分位，神經系統未受進一步損傷且展現正常活力。
這一療法不僅突破了“單患者定制化基因治療"的技術壁壘，更通過科研、產業與醫療系統的高效協同，為罕見病治療開創了“精準定制"的全新范式。諾貝爾獎得主Jennifer Doudna盛贊其為“醫學史里程碑"，標志著人類正式踏入“可治愈遺傳性疑難雜癥"的新時代。目前，研究團隊正推動“平臺試驗"，旨在針對同類疾病的多個突變開發快速編輯方案，讓個體化治療從“個案"走向“可復制模式"。
圖1.個體化CRISPR基因編輯療法重大突破文獻來源
在這場改寫生命科學的競速中，優質工具酶與核心原料是突破技術瓶頸的關鍵。翌圣生物可提供一系列高品質Cas蛋白及相關產品，助力研究人員更高效、更精準地完成基因編輯實驗，推動基因治療研究邁向新高度。以下為您精選明星產品矩陣，助您在基因編輯賽道上加速突破。
Cas9蛋白
Cas9 Nuclease (Cat#14701ES)
Cas9 Nuclease來源于野生型釀膿鏈球菌S. pyogenes，是依賴RNA介導的內切核酸酶，可以特異地切割雙鏈DNA（在DNA PAM存在的情況下，也可以切割單鏈DNA或單鏈RNA）。Cas9切割位點位于目標序列內，離PAM（NGG）區3個堿基。本產品經過密碼子優化及核定位信號（NLS）設計，由大腸桿菌重組表達而來，編輯效率高，可用于細胞（造血干細胞、T細胞等）的基因修飾，也可用于分子診斷，檢測病原體等。
性能展示
A：體外切割測試：3批次體外切割活性均達98%以上。
B：體內基因敲除，敲除效率與進口品牌一致。
圖2.Cas9 Nuclease體外切割活性及基因敲除效率結果
Cas12a蛋白
ArCas12a Nuclease (Cat#14702ES)
ArCas12a核酸內切酶，源自Agathobacter rectalis細菌的CRISPR系統，別名Cpf1，是一個包含1263個氨基酸的單體蛋白。Cas12a缺乏HNH結構域，可單獨利用其RuvC結構域在CRISPR RNA（crRNA）引導下識別位于靶標核酸5’端富含胸腺嘧啶（T）的PAM區而啟動對靶標DNA的切割，已成功用于許多哺乳動物和植物的基因組編輯。此外Cas12a還具有反式切割活性，可不加選擇地切割反應體系中的非靶標單鏈DNA。與LbCas12a/AsCas12a相比，ArCas12a具有更高的溫度適應性（25-55℃），可適用于基因組編輯及核酸檢測等。
性能展示
雙鏈DNA高效體外切割
圖3.ArCas12a順式切割活性檢測 M：Marker；C：模板雙鏈DNA
注：在crRNA的引導下可高效的切割雙鏈DNA（600 bp）產生兩段切割產物（200 bp+400 bp）
反式切割活性強，可用于核酸檢測
圖4.ArCas12a反式切割活性檢測
注：以雙鏈DNA模板為靶標，加入ArCas12a、crRNA（存在與模板DNA序列互補的spacer區）及單鏈DNA報告探針（含有熒光報告基團）進行體外切割，當ArCas12a與crRNA及靶標DNA形成復合體后會激活反式切割活性，切割單鏈DNA報告探針，從而發出熒光。結果顯示，翌圣ArCas12a與crRNA及模板DNA形成復合體后具有反式切割活性，可剪切單鏈DNA。
Cas12b蛋白
AapCas12b Nuclease (Cat#14808ES)
AapCas12b核酸酶（又名C2c1）是由tracrRNA:crRNA（或sgRNA）介導的DNA核酸內切酶，來源于嗜酸耐熱菌Alicyclobacillus acidophilus，在靶標雙鏈DNA存在PAM（TTN）序列的情況下，特異地剪切靶標雙鏈DNA，使DNA雙鏈斷裂并生成粘性末端。AapCas12b可不依賴PAM序列特異地剪切單鏈DNA靶標。雙鏈或單鏈DNA靶標均能激活AapCas12b的反式剪切活性（即旁路剪切活性/附屬剪切活性），即當AapCas12b酶與sgRNA、靶標DNA結合形成三元復合物后，便會被激活針對非特異序列ssDNA的反式剪切活性，將體系中的任意序列ssDNA切碎。AapCas12b最佳剪切反應溫度為60℃，比AacCas12b更耐高溫，適用于與LAMP聯用，開發恒溫擴增/CRISPR-Cas檢測體系。
性能展示
順勢切割活性：效果媲美進口品牌T*
圖5.AapCas12b Nuclease (10 μM)順式切割活性驗證
注：在20 μL的反應體系，含有帶PMA序列的雙鏈Target DNA、sgRNA、Cas12b和1×reaction buffer，在60°C下反應30 min，85°C下滅活5 min，在瓊脂糖凝膠電泳測定結果顯示，三批次AapCas12b Nuclease (10 μM) (Cat#14808ES)均能有效切割雙鏈Target DNA,切割效果與進口品牌T*相當。
反式切割活性：能有效切割體系中的ssDNA
圖6.AapCas12b Nuclease (10 μM)反式切割活性驗證
注：在20 μL的反應體系，含有帶PMA序列的雙鏈Target DNA、sgRNA、Cas12b、Report ssDNA熒光探針和1×reaction buffer，在60℃反應1h，每30 sec采集一次熒光信號，結果顯示在Target DNA、sgRNA、Cas12b共同存在的情況下，Report ssDNA熒光探針能被切割，從而釋放熒光信號。
sgRNA合成試劑盒
Hifair® Precision sgRNA Synthesis Kit ( Cat#11355ES )
該試劑盒的應用極為簡便，用戶只需設計一條特定的上游引物，并結合試劑盒提供的其他試劑，即可在短短4小時內合成出20-100 μg高品質的sgRNA。所產生的sgRNA具備高產量、高純度和高活性等優勢，在基因編輯過程中能顯著提升編輯效率，并大幅降低脫靶現象的發生幾率，確?；蚓庉嫻ぷ饕愿咝屎透邷蚀_性進行。
性能展示
高合成產量：單管反應4小時，sgRNA產量可達20-100 μg
圖7.不同時間的sgRNA的合成量
適用范圍廣：不同種類的sgRNA均可獲得高產量
圖8.不同序列的sgRNA的合成產量
高純度：合成的sgRNA條帶單一
圖9.合成的sgRNA的純度（安捷倫2100測定）
高活性：合成的sgRNA可有效引導Cas9切割靶標DNA
圖10.sgRNA的剪切效率效果圖
當前，CRISPR基因編輯技術正處于快速發展的時期，整個領域仍在不斷成熟和完善中。隨著科學研究和技術應用的持續推進，我們有理由相信未來將涌現出更多創新性的基因編輯工具，這些新工具將進一步拓寬該技術的應用場景與潛力。
如果您對基因編輯有任何需求或興趣，歡迎隨時聯系我們。無論是在基礎研究、藥物開發、農業生物技術、合成生物學等領域，我們都致力于為您提供前沿的技術支持和服務，共同探索基因編輯帶來的無限可能。
基因編輯相關產品推薦
產品應用 | 產品定位 | 產品名稱 | 產品貨號 |
通用型 | 帶NLS的SpCas9 | Cas9 Nuclease | 14701ES |
編輯效率媲美cas9 | OpenCRISPR-1 | 14703ES | |
熒光觀察/流式分選 | 帶EGFP熒光標簽的SpCas9 | NLS-Cas9-EGFP Nuclease | 11364ES |
基因調控 | 無剪切酶活性的Cas9 | dCas9 Nuclease | 11351ES |
小分子量遞送 | Cas12a | ArCas12a Nuclease | 14702ES |
Cas12b | AapCas12b Nuclease | 14808ES | |
sgRNA制備 | sgRNA合成 | Hifair® Precision sgRNA Synthesis Kit | 11355ES |
sgRNA純化 | Hieff NGS® RNA Cleaner | 12602ES | |
編輯效率檢測 | 編輯效率檢測 | T7 Endonuclease I | 14548ES |
參考文獻
[1] Musunuru K, Grandinette S A, Wang X, et al. Patient-Specific In Vivo Gene Editing to Treat a Rare Genetic Disease[J]. New England Journal of Medicine, 2025.
[2] Kretzschmar K, Watt F M. Lineage tracing[J]. Cell, 2012, 148(1): 33-45.
[3] Hsu Y C. Theory and practice of lineage tracing[J]. Stem Cells, 2015, 33(11): 3197-3204.
Chen C, Liao Y, Zhu M, et al. Dual-nuclease single-cell lineage tracing by Cas9 and Cas12a[J]. Cell Reports, 2025, 44(1).
